Методы количественного учета водорослейУчебные материалы по биологии / Макрофитон и фитопланктон озера Белое / Методы количественного учета водорослей
Количественному учету подвергаются только количественные пробы фитопланктона, фитобентоса и перифитона.
Данные о численности водорослей являются исходным материалом для вычисления их биомассы и для пересчета других количественных показателей (содержание пигментов, белков, фотосинтеза и др.) на одну клетку или единицу биомассы. Счетный метод наиболее старый и самый трудоемкий, однако при биологическом анализе он всегда будет сохранять свою ценность.
Подсчет численности водорослей осуществляется в специальных счетных камерах определенного объема: Нажотта, Учинская, Горяева и др.
При гидробиологических исследованиях необходимо получить статистически достоверные и сравнимые по численности и биомассе результаты. Перед счетом проба тщательно перемешивается продуванием воздухом через чистую трубочку с входным отверстием не менее 2мм, и затем одна капля пробы этой же трубочкой вносится в счетную камеру. Камера закрывается покровным стеклом, и после оседания водорослей проводится просмотр пробы и определение видового состава всех встреченных водорослей. Подавляющее большинство водорослей хорошо определяется в фиксированном состоянии.
Один из наиболее существенных аспектов счетного метода - статистическая достоверность подсчета. Поскольку всю пробу подсчитать невозможно, то возникает вопрос, какую ее часть необходимо обработать, чтобы иметь правильное суждение о пробе в целом.
Даже при самом тщательным заполнении камеры площадью дна 1кв. см организмы в ней распределяются неравномерно. Поэтому необходимо просчитывать каждую пятую полосу камеры, а при высокой численности - каждую десятую (в камерах Нажотта, Учинская). Водоросли в камере Горяева просчитываются полностью.
Крупные формы планктона просчитывают в камерах большого объема.
Сконцентрированный фитопланктон содержит мелкие и крупные водоросли, находящиеся в разных количественных соотношениях, поэтому специалисты рекомендуют несколько правил, соблюдение которых существенно облегчает анализ выборки и повышает качество обрабатываемого материала.
. Каждую выборку следует просматривать при двух различных увеличениях - большом и малом - для раздельного учета крупных и мелких форм фитопланктона.
. При учете численности каждой популяции в зависимости от ее численности можно в пределах одной выборки анализировать различное число подпроб (полос). В одном случае рекомендуют сократить число анализируемых камер. Поэтому для наиболее обильных по численности видов рекомендуется вести учет в половине или даже четверти объема каждой камеры, изменяя тем самым по отношении к ним объем репрезентативной выборки.
. Исследуя содержимое полос, просчет особей в счетной камере следует вести челноком.
При изучении фитопланктона необходимо все встреченные в камере водоросли тщательно замерять, отмечать их жизненное состояние и стадию развития. Можно вывести средние размеры клеток, однако обязательно это надо делать при работе с исследованным материалом, причем для каждого сезона и года необходимы новые измерения. Ни в коем случае нельзя пользоваться средними размерами, полученными на других водоемах, так как, такая нивелировка сводит на нет всю предыдущую попытку исследователя получить репрезентативный материал.
Смотрите также
Биополимеры бактериальной клеточной стенки
...
Влияние света на процесс фотосинтеза
Введение
Бесконечна
сложна и разнообразна жизнь. Австралийские эвкалипты поднимаются ввысь на 150
м, а ряска, покрывающая пруды, достигают всего лишь 1 мм. Американская секвойя
име ...
Взаимосвязь обменов в организме. Патохимия сахарного диабета
...